9º práctica: levadura+azúcar y observación al microscopio de hifas del casco de caballo de Fomes fomentarius

• Materiales a usar:

- papel de filtro

- agua destilada

- placa de petri

- porta y cubre

- sobre de azúcar

- levadura fresca de pan

- espátula

- pipeta pasteur

- aceite de inmersión

- Microscopio óptico

• Para la observación de hifas de Fomes fomentarius:

- Estereoscopio

- porta

- pinzas

Cogemos un poco de levadura de pan con azúcar y agua destilada y lo mezclamos en la placa de petri; añadiendo azúcar lo que conseguimos es activar la levadura. 

         

Dejamos reposar 5 minutos y con la pipeta pasteur tomamos una pequeña muestra y la ponemos en el porta y luego le ponemos un cubre y lo llevamos al microscopio. Observaremos multiplicación por gemación.

  

Vista x40                                                                     Vista x100 (con aceite de inmersión)

Y el otro ejercicio que hicimos, la observación al microscopio de hifas del casco de caballo del hongo Fomes fomentarius.

Cogimos una pequeña muestra de hifas del casco de caballo , lo pusimos sobre el porta y lo observamos al estereoscopio

   

8º práctica: Diluciones seriadas con azul de metileno

Material a utilizar:

- Papel de filtro

- vidrio de reloj

- agua destilada

- matraz Erlenmeyer

- colorante azul de metileno al 0.2%

- tubos de ensayo

- gradilla

- pipeta automática

- prepipeta

- pipeta de 10ml

- bortex

     

Una vez realizada la disolución 1/10 azul de metileno al 0.2%,para el cual hemos cogido 0,2g de colorante azul de metileno con 100ml de agua destilada lo que nos salió una dilución al 0,2 p/v, cogemos 9ml de agua destilada para cada tubo y llenamos los 4 tubos de ensayo, y 1ml de solución madre de azul de metileno para el primero tubo de ensayo, y agitamos en el bortex. Cambiamos la punta de la pipeta y ponemos una nueva, y cogemos del primer tubo de ensayo 1ml y lo pasamos al 2º tubo de ensayo, y agitamos en el bortex; y así sucesivamente hasta terminar los 4 tubos.

           

Resultado final:

7º práctica: Espora de la seta Coprinus comatus

Materiales a usar:

- papel de filtro

- mechero de alcohol

- asa de siembra

- gradilla

- tubo de ensayo

- pipeta pasteur

- porta y cubre

- microscopio óptico

- aceite de inmersión

- estereoscopio

Lo primero que haremos será coger una muestra con una pipeta pasteur de la tinta que produce esta seta al hacer la autodigestión y la llevamos al tubo de ensayo.

Después, encendemos el mechero de alcohol, desinfectamos el asa de siembra y tomamos una muestra del tubo de ensayo y la depositamos en el porta.

                                       

   

Desinfectamos el asa de siembra de nuevo. La muestra la cubrimos con un cubre y la llevamos a observar en el microscopio:

Visión x40 

visión x100 con aceite de inmersión

A continuación, cogeremos otra muestra de la tinta, la pondremos en otro porta y la llevaremos a observar al estereoscopio:

6º práctica de laboratorio: Observación de yogur en fresco y tinción.

En esta práctica hemos hecho observación al microscopio de yogur en fresco:

Para ello hemos utilizado los siguientes materiales:
-papel de filtro
-agua destilada
-pinzas
-asa de siembra
-porta y cubre
-microscopio óptico
-mechero de alcohol
-pesasustancias
-muestra de yogur

    

 Visión x4

 Visión x10

 Visión x40

Después de observar el yogur en fresco, hicimos una tinción para ver bacilos:
Para ello, usamos el colorante azul de metilo, y además añadimos los siguientes materiales a usar:
- pipeta automática
- probeta
- alcohol 96º

                    

Echamos azul de metilo en disolución sobre la muestra, esperamos 5 min, después aclaramos con agua destilada, y por último lo fijamos con alcohol 96º y lo ponemos a ver al microscopio para ver los bacilos.

Clasificación de los microorganismos en relación con el oxígeno

Aerobio obligado:(Bacillus)        Microaerófilo: (Campylobacter yeyuni)      Anaerobio obligado:(Clostridium botulinum)

      

Anaerobio facultativo: (Enterobacteriaceae)

Clasificación de bacterias tradicional